w66国际·利来(中国)最给力的老牌

（1）型号一：恒温混匀仪（可选）、磁力架和离心机

（2）型号二：恒温混匀仪和w66国际·利来CWE2100/CWE3200全自动核酸提取仪。

（3）型号三：恒温混匀仪和CWE960全自动核酸提取仪。

适用于新鲜血液、抗凝全血制成的血片、唾液、口腔拭子、新鲜或冷冻组织。

不可以。

DNA产量低通常由以下原因导致，请根据实际情况优化操作：

1. 裂解缓冲液出现沉淀。解决办法：用前请先检查裂解缓冲液1和裂解缓冲液2是否出现沉淀，如有沉淀，可在56℃水浴几分钟重新溶解。

2. 缓冲液蒸发。解决办法：确保缓冲液密封保存，避免蒸发。

3. 漂洗过程中出现DNA损失。解决办法：漂洗缓冲液1和漂洗缓冲液2使用前应按试剂瓶标签加入无水乙醇。

4. 磁珠悬浮液及异丙醇-磁珠混合物混匀不充分。解决办法：（1） 磁珠悬浮液使用前需充分涡旋混匀至少20秒；（2）异丙醇-磁珠混合液配制后必须再次涡旋振荡10秒以确保溶液均一；（3）每处理6-10个样本后需补充涡旋10秒以维持溶液稳定性。

5. 样本裂解不完全。解决办法：适当延长裂解时间（组织样本可延长至1小时或过夜）；确保样本充分破碎（组织需液氮研磨或匀浆处理）；若无恒温混匀仪，裂解过程中需定期涡旋混匀。

6. 起始物料的储存不当。解决办法：使用新鲜或妥善保存的样本（避免反复冻融）。

DNA在下游应用中表现不佳通常由以下原因导致：

1. 洗脱液中DNA含量极低。解决办法：请参考前文A4部分的解决方案。

2. 洗脱液中存在磁珠残留。解决办法：微量磁珠残留通常不影响实验结果。如需进一步去除，可将含有洗脱液的离心管置于磁力架上吸附后，小心转移上清至新管。

3. 存在盐离子残留。解决办法：严格按说明书操作顺序加入漂洗缓冲液。 

4. DNA用量过多影响下游实验。解决办法：过量DNA可能抑制酶反应，建议使用分光光度计在260nm处测定DNA浓度，精确控制使用量

1. A260/A280比值低（<1.7）。原因：蛋白或乙醇残留导致污染。解决方法：

1) 确保裂解充分：使用前请检查裂解缓冲液1和裂解缓冲液2是否出现结晶或者沉淀，如有结晶或者沉淀，请将裂解缓冲液于56℃水浴孵育重新溶解。 

2) 去除乙醇残留：漂洗步骤完成后将离心管固定于磁力架上室温静置5-10分钟使乙醇充分挥发。

2. A260/A280比值高（>2.0）。原因：RNA残留或核酸降解。

解决方法：

1) 可在加入裂解缓冲液2之前加入4 μL RNase A（100 mg/mL）溶液，震荡15秒，室温放置5 分钟。RNase A本试剂盒并未提供，如需要可单独向本公司订购，货号：CW0601S。

2) 避免降解：使用新鲜样本，避免样本反复冻融。

3) 优化洗脱：若采用灭菌水作为洗脱液。使用前需调节水的pH值至7.0-8.5（可用NaOH调节）。

磁珠悬浮液严禁冰冻或离心，否则可能造成不可逆的损伤，使用前需充分振荡混匀以确保均匀性。

若下游实验对pH值或EDTA敏感，可采用灭菌水作为洗脱液。使用前需调节水的pH值至7.0-8.5（可用NaOH调节），pH值低于7.0会显著降低洗脱效率。如需长期保存洗脱产物，推荐使用洗脱缓冲液洗脱，并于-20℃保存。

原因：样本裂解不完全；96孔板位置错误。解决方法：适当延长裂解时间（组织样本可延长至1小时或过夜），确保样本充分破碎（组织需液氮研磨或匀浆处理）。若无恒温混匀仪，裂解过程中需定期涡旋混匀；严格按照说明书要求放置96孔板，完整执行所有洗涤步骤。